Questão 2: A coleta é um ponto crucial, que pode inviabilizar complemente a análise dos materiais, causando gastos desnecessários e retrabalho. Além disso, o paciente terá que voltar ao laboratório ou será submetido a novo procedimento invasivo para a recoleta. Nos seus relatórios de pedido de recoleta por amostras inadequadas, a hemocultura tem sido a mais frequente, evidenciando uma dificuldade nos técnicos durante a coleta. Sendo assim, ELABORE um Procedimento Operacional Padrão (POP) sobre a coleta de hemocultura, abordando os tópicos abaixo: a. Número de amostras e intervalo de tempo entre as punções. b. Volume de sangue e locais de punção. c. Procedimento de coleta.

a. Número de amostras e intervalo de tempo entre as punções.

– Adultos (suspeita geral de bacteremia/sepsis): coletar 2 conjuntos (cada conjunto = 1 frasco aeróbio + 1 anaeróbio) antes do antibiótico, de locais distintos, com 15–30 min entre si (se possível). Em instabilidade, coletar os 2 conjuntos em sequência e iniciar antibiótico.

– Endocardite/hemocultura difícil: 3 conjuntos nas primeiras 1–2 h ou até 24 h.

– Pediatria: geralmente 1–2 conjuntos conforme peso/volume disponível.

b. Volume de sangue e locais de punção.

– Adultos: 20–30 mL por conjunto (ideal: 10 mL em cada frasco aeróbio e anaeróbio). O volume é o fator mais crítico para positividade.

–  Pediatria: usar frasco pediátrico; coletar 1–3 mL (lactentes) ou conforme tabela de peso/idade; priorizar aeróbio quando o volume for baixo.

– Locais de punção: venopunção periférica (preferencial) em dois sítios diferentes; evitar coleta por cateter/port (usar apenas se sem acesso periférico ou para investigação de infecção relacionada a cateter).

c. Procedimento de coleta.

1. Identificar paciente e higienizar mãos; paramentar EPI.
2. Antissepsia das tampas dos frascos (álcool 70%) e da pele: clorexidina alcoólica 2% (friccionar 30 s e deixar secar completamente). Se alergia, usar PVPI. Não repalpar após antissepsia (se necessário, usar luva estéril).
3. Punção periférica com sistema fechado (butterfly) sem tocar no sítio.
4. Ordem de inoculação:
5. Com butterfly: aeróbio primeiro, depois anaeróbio (evita entrada de ar no anaeróbio).
6. Com seringa: anaeróbio primeiro, depois aeróbio.
7. Inocular o volume correto em cada frasco (adulto: 10 mL), sem ultrapassar a marca; não refrigerar.
8. Homogeneizar suavemente (não agitar vigorosamente), rotular (data/hora, sítio, coletor) e enviar imediatamente ao laboratório/incubador (ideal: < 2 h).
9. Registrar antes do antibiótico; se já em uso, informar horário da última dose.

d. Coleta de hemoculturas para diagnóstico de infecção relacionada a cateter vascular.

Para investigar infecção relacionada ao cateter, colho as hemoculturas ao mesmo tempo: uma por veia periférica e outra pelo próprio cateter (se tiver vários lúmens, uma de cada lúmen). Em adultos, uso o mesmo volume nos dois conjuntos (em geral 20–30 mL por conjunto, divididos em dois frascos). Antes da punção, pauso soro e antibiótico por alguns minutos e capricho na higiene: álcool 70% nas tampas dos frascos e clorexidina alcoólica 2% na pele e no hub; deixo secar bem e evito tocar de novo no local. Coletado o sangue, inoculo direto nos frascos, respeitando o volume indicado, não refrigero, identifico cada frasco com site/lúmen e horário e envio logo ao laboratório (de preferência em até 2 horas). No cateter, não descarto os primeiros mililitros, porque ajudam a mostrar colonização do lúmen. Se o cateter for retirado, envio também cerca de 5 cm da ponta para cultura, o que complementa o diagnóstico. Depois, o laboratório compara o tempo para positivar entre a amostra periférica e a do cateter; quando a do cateter dá positiva bem antes, isso reforça a suspeita de infecção ligada ao dispositivo.

Resposta Completa: Mapa de Microbiologia Clínica – 53/2025